Публикация научных работ

Статьи наших авторов

Мультилокусное генотипирование как современный подход в диагностике микроспоридий – облигатных внутриклеточных паразитов животных

Токарев Ю. С., Васильева А. А., Грушевая И. В., Малыш Ю. М. Мультилокусное генотипирование как современный подход в диагностике микроспоридий – облигатных внутриклеточных паразитов животных // Проблемы современной науки и образования / Problems of modern science and education - 2015 - № 12 (42) - см. журнал

Токарев Юрий Сергеевич / Tokarev Yurii Sergeevich – доктор биологических наук, старший научный сотрудник,
лаборатория микробиологической защиты растений,
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение
Всероссийский научно-исследовательский институт защиты растений, г. Санкт-Петербург, Пушкин;
Васильева Александра Андреевна / Vasilieva Aleksandra Andreevna – лаборант-исследователь,
 лаборатория микробиологической защиты растений,
Санкт-Петербургский политехнический университет Петра Великого, г. Санкт-Петербург;
Грушевая Инна Валентиновна / Grushevaya Inna Valentinovna – младший научный сотрудник;
Малыш Юлия Михайловна / Malysh Yuliya Mikhailovna – кандидат биологических наук, научный сотрудник, лаборатория сельскохозяйственной энтомологии,
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение
Всероссийский научно-исследовательский институт защиты растений, г. Санкт-Петербург, Пушкин

Аннотация: в работе приведены данные о современном состоянии исследований в области диагностики микроспоридий, рассмотрены проблемы связей между возбудителями микроспоридиозов беспозвоночных и позвоночных хозяев, обобщены результаты мультилокусного генотипирования этой группы паразитов.
Abstract: data concering modern state of microsporidia diagnostics are given. Problems concerning links between agents of microsporidiosis of invertebrate and vertebrate hosts are discussed. Results of multilocus geonotyping of parasites of this group are summarized.
Ключевые слова: микроспоридии, оппортунистические инфекции, мультилокусное генотипирование.
Keywords: microsporidia, opportunistic infections, multilocus genotyping.

Литература
1.    Vávra J., Lukeš J. Microsporidia and 'the art of living together' // Adv. Parasitol. 2013. V. 82. P. 253–319.
2.    Исси И. В., Токарев Ю. С. Оценка перспектив применения микроспоридий в биологической защите растений // Мат. XIV Съезда РЭО. Санкт-Петербург, 2012. С. 169.
3.    Токарев Ю. С., Малыш Ю. М., Дубинина Е. В., Алексеев А. Н., Фролов А. Н., Исси И. В. Значение микроспоридий для микробиологического контроля численности вредных членистоногих // Защита и карантин растений. 2007. № 12. С. 14–16.
4.    Tokarev Y. S., Levchenko M. V., Naumov A. M., Senderskiy I. V., Lednev G. R. Interactions of two insect pathogens, Paranosema locustae (Protista: Microsporidia) and Metarhizium acridum (Fungi: Hypocreales), during a mixed infection of Locusta migratoria (Insecta: Orthoptera) nymphs // J. Invertebr. Pathol. 2011. V. 106. P. 336–338.
5.    Didier E. S., Bessinger G. T. Host-parasite relationships in microsporidiosis: animal models and immunology. In: Wittner. M. (Ed.), The microsporidia and microsporidiosis. Washington, D. C., 1999. P. 225–257.
6.    Vossbrinck C. R., Debrunner-Vossbrinck B. A. Molecular phylogeny of the Microsporidia: ecological, ultrastructural and taxonomic considerations // Folia Parasitol. 2005. V. 52. V. 131–142.
7.    Franzen C., Nassonova E. S., Scholmerich J., Issi I. V. Transfer of the members of the genus Brachiola (Microsporidia) to the genus Anncaliia based on ultrastructural and molecular data // J. Eukaryot. Microbiol. 2006. V. 53. P. 26–35.
8.    Choudhary M. M., Metcalfe M. G., Arrambide K., Bern C., Visvesvara G. S., Pieniazek N. J., Bandea R. D., DeLeon-Carnes M., Adem P., Choudhary M. M., Zaki S. R., Saeed M. U. Tubulinosema sp. microsporidian myositis in immunosuppressed patient // Emerg. Infect. Dis. 2011. V. 17. P. 1727–1730.
9.    Meissner E. G., Bennett J. E., Qvarnstrom Y., da Silva A., Chu E. Y., Tsokos M., Gea-Banacloche J. Disseminated microsporidiosis in an immunosuppressed patient // Emerg. Infect. Dis. 2012. V. 18. P. 1155–1158.
10.    Malysh J. M., Tokarev Y. S., Sitnicova N. V., Martemyanov V. V., Frolov A. N., Issi I. V. Tubulinosema loxostegi sp.n. (Microsporidia: Tubulinosematidae) from the beet webworm Loxostege sticticalis L. (Lepidoptera: Crambidae) in Western Siberia // Acta Protozool. 2013. V. 52. P. 299–308.
11.    Токарев Ю. С. Филогения и паразитические свойства энтомопатогенных микроспоридий. Дисс. … д. б. н. 2013. С-Петербург, Пушкин.
12.    Tokarev Y. S. Molecular phylogeny of entomopathogenic microsporidia, a review of the last five years of study // Euroasian Entomol. J. 2010. V. 9. P. 571–576.
13.    Tokarev Yu.S., Malysh J. M., Kononchuk A. G., Seliverstova E. V., Frolov A. N., Issi I. V. Redefinition of Nosema pyrausta (Perezia pyraustae Paillot 1927) basing upon ultrastructural and molecular phylogenetic studies. Parasitol. Res. 2015. V. 114(2). P. 759–761.
14.    Cavalier-Smith T., Chao E. E., Snell E. A., Berney C., Fiore-Donno A. M., Lewis R. Multigene eukaryote phylogeny reveals the likely protozoan ancestors of opisthokonts (animals, fungi, choanozoans) and Amoebozoa // Mol. Phylogenet. Evol. 2014. V. 81. P. 71–85.
15.    Cornman R. S., Chen Y. P., Schatz M. C., Street C., Zhao Y., Desany B., Egholm M., Hutchison S., Pettis J. S., Lipkin W. I., Evans J. D. Genomic analyses of the microsporidian Nosema ceranae, an emergent pathogen of honey bees // PLoS Pathog. 2009. V. 5 (6). P. e1000466.
16.    Capella-Gutiérrez S., Marcet-Houben M., Gabaldón T. Phylogenomics supports microsporidia as the earliest diverging clade of sequenced fungi // BMC Biol. 2012. V. 10. P. 47.
17.    Cuomo C. A., Desjardins C. A., Bakowski M. A., Goldberg J., Ma A. T., Becnel J. J., Didier E. S., Fan L., Heiman D. I., Levin J. Z., Young S., Zeng Q., Troemel E. R. Microsporidian genome analysis reveals evolutionary strategies for obligate intracellular growth // Genome Res. 2012. V. 22(12). P. 2478–2488.
18.    Haag K. L., James T. Y., Pombert J. F., Larsson R., Schaer T. M., Refardt D., Ebert D. Evolution of a morphological novelty occurred before genome compaction in a lineage of extreme parasites // Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 2014. V. 111(43). P. 15480–15485.
19.    van Dijk E. L., Auger H., Jaszczyszyn Y., Thermes C. Ten years of next-generation sequencing technology. Trends Genet. 2014. V. 30(9). P. 418–426.
20.    Issi I. V., Tokarev Y. S., Seliverstova E. V., Voronin V. N. Taxonomy of Neoperezia chironomi and Neoperezia semenovaiae comb. nov. (Microsporidia, Aquasporidia): lessons from ultrastructure and ribosomal DNA sequence data // Eur. J. Protistol. 2012. V. 48. P. 17–29.
21.    Токарев Ю. С., Воронин В. Н., Сендерский И. В., Исси И. В. Микроспоридия Glugea gasterostei Voronin 1974 (Microsporidia: Marinosporidia) из трехиглой колюшки Gasterosteus aculeatus (Actinopterygii: Gasterosteiformes) как самостоятельный вид // Паразитология. 2015. Т. 49. С. 81–92.
22.    Sagastume S., del Aguila C., Martín-Hernández R., Higes M., Henriques-Gil N. Polymorphism and recombination for rDNA in the putatively asexual microsporidian Nosema ceranae, a pathogen of honeybees // Environ Microbiol. 2011. V. 13(1). P. 84–95.

Поделитесь данной статьей, повысьте свой научный статус в социальных сетях